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肾脏病临床|靶向氧化三甲胺治疗慢性肾脏病的研究进展

2025-05-08作者:壹声资讯
非原创

杨 柳 综述 谢红浪 审校


DOI:10.3969/j.issn.1006-298X.2024.05.014

[基金项目] 东部战区总医院院管课题(22LCYY-XH7)

[作者单位] 东部战区总医院 国家肾脏疾病临床医学研究中心(南京,210016)


摘要 饮食来源胆碱经肠道微生物代谢后产生氧化三甲胺(TMAO),是心血管疾病、慢性肾脏病(CKD)、2型糖尿病等疾病进展的独立危险因素。TMAO在人体内主要经肾小球滤过和肾小管分泌排出,肾功能下降可致循环中TMAO浓度升高,诱导动脉粥样硬化,增加卒中风险,促进炎症反应和氧化应激,导致心肌与肾间质纤维化。钠-葡萄糖协同转运蛋白2抑制剂、肠促胰素类药物可改变循环TMAO浓度,此作用对原发病疗效的影响程度尚无定论。除调整饮食结构外,益生菌或益生元、三甲胺(TMA)抑制剂、黄素单加氧酶3(FMO3)抑制剂等靶向TMAO治疗药物可不同程度影响肠道TMAO生成,但对宿主全身及CKD疾病进程的确切影响仍需深入研究。本文总结了靶向TMAO治疗药物的研究进展,包括使用益生菌或益生元调节肠道菌群组成,降低代谢产生TMA水平,以及靶向抑制TMA产生菌生成TMAO等,为此类药物治疗CKD提供理论依据。


关键词 慢性肾脏病 氧化三甲胺 治疗


Advances in study on targeting trimethylamin N-oxide therapy for chronic kidney disease

YANG LiuXIE Honglang

National Clinical Research Center for Kidney DiseasesJinling HospitalNanjing 210016China


ABSTRACT Diet-based choline is metabolized by gut microbes to produce trimethylamine oxide (TMAO), which is an independent risk factor for the progression of major diseases such as cardiovascular disease, chronic kidney disease (CKD), and type 2 diabetes. TMAO is excreted in the human body mainly by glomerular filtration and renal tubule secretion. Decreased renal function can lead to increased circulating TMAO concentration, induce atherosclerosis, increase the risk of stroke, promote inflammatory response and oxidative stress, and lead to myocardial and renal interstitial fibrosis. Sodium-glucose transporter 2 inhibitors and incretin can change the circulating TMAO concentration, and the effect on the primary disease remains to be determined. In addition to adjusting diet, targeted TMAO therapeutics such as probiotics or prebiotics, trimethylamine (TMA) inhibitors, and flavin monooxygenase 3 (FMO3) inhibitors can affect intestinal TMAO production to varying degrees, but the exact impact on body of the host and the course of CKD still needs further study. This review summaries the researching development progress of targeting TMAO drugs,such as regulating the composition of the gut microbiota and reduce the metabolic production of TMA levels by probiotics or prebiotics, inhibiting TMA producing bacteria from producing TMAO by TMA inhibitors, to provide theoretical basis for their use as new treatment strategies of CKD.


Key words chronic kidney disease   trimethylamin N-oxide   treatment



氧化三甲胺(TMAO)是调节机体渗透压、稳定细胞蛋白功能的小分子化合物,微量分布于人体液当中,根据来源分为肠道菌群依赖型和非肠道菌群依赖型,前者指红肉或蛋类经肠道细菌代谢产生的TMAO,后者指海鲜中天然含有的TMAO[1]。当宿主大量摄入红肉、牛奶、禽蛋类等富含胆碱、肉碱、甜菜碱的食物,肠道菌群代谢产生三甲胺(TMA),TMA经肠道吸收后由门静脉转运至肝脏,继而在肝脏黄素单加氧酶3(FMO3)作用下产生氮氧化物TAMO,TMAO主要在肾脏代谢随尿液排出[1](图1)。研究表明,TMAO是心血管疾病(CVD)、慢性肾脏病(CKD)、2型糖尿病(T2DM)等疾病进展的独立危险因素,增加全因死亡率[2]。作为全球增速第二的致死病因, CKD预计在2040年成为第五位过早死亡原因[3]。近年,对TMAO的生物学功能及其在CVD、CKD、T2DM等疾病的关联研究引起了广泛关注,针对TAMO进行靶向性干预以延缓CKD发展的基础和临床研究均有所进展。本文将总结靶向TMAO治疗CKD的最新研究成果,为其临床转化提供理论依据。


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图1 不同食物经特定肠道菌群作用产生TMAO的代谢途径

FMO3:黄素单氧化酶3;TMAO: 氧化三甲胺;宿主大量摄入富含胆碱饮食后,肠道菌群代谢产生三甲胺,经肠道吸收后由门静脉转运至肝脏,在肝脏FMO3作用下产生TAMO


TMAO影响CKD的基础研究



CKD常合并肠道菌群紊乱,合并T2DM时肠道产TMA微生物丰度升高尤其明显。Klaudia等[4]在饮用水中添加TMA 200 μM/d或500 μM/d喂养12周龄雄性大鼠18周,发现TMA 500 μM/d组大鼠动脉收缩压及尿蛋白/肌酐比值、尿液肾损伤分子1(KIM-1)、尿糖等肾损伤标志物水平均明显高于对照组,动脉和小动脉中膜萎缩更严重,血清TMAO水平和24 h尿TMAO排泄量升高24倍,肝脏、肾脏和心脏TMAO表达升高,表明长期暴露于TMA能够造成肾脏损伤。TMAO主要经肾脏排出,肾功能下降后循环TMAO浓度升高。TMAO加重肾损伤的机制仍不完全清楚,可能与促进炎症和纤维化、诱导氧化应激、影响能量代谢、加重心血管病变等机制相关。TMAO可活化核因子κB(NF-κB)信号通路,诱导炎症基因表达,通过促进炎症反应和氧化应激导致肾间质纤维化[5]。一项针对非透析CKD患者的荟萃分析表明,循环TMAO水平与估算的肾小球滤过率(eGFR)负相关,与炎症标志物水平正相关[6]。高TMAO水平促使巨噬细胞M1极化,刺激核苷酸结合寡聚化结构域(NOD)样受体热蛋白结构域相关蛋白3(NLRP3)、天冬氨酸特异性半胱氨酸蛋白酶1(caspase-1)表达,促进白细胞介素(IL)-1β、IL-18释放,活化炎性小体,并激活p38丝裂原活化蛋白激酶(p38MAPK),促进炎症反应,激活转化生长因子β/Sma和Mad相关蛋白(TGF-β/Smad2)通路、上调α-平滑肌肌动蛋白(α-SMA)表达,诱导肾纤维母细胞增殖,通过活化蛋白激酶RNA样内质网激酶(PERK)/丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶(AKT)/哺乳动物雷帕霉素靶蛋白(mTOR)通路提高肾成纤维母细胞I型胶原表达水平,促进纤维化发生(图2)[7-8]


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图2 TMAO促炎作用机制[7-8]

TMAO:氧化三甲胺;IL:白细胞介素;NF-κB:核因子κB;MAPK:丝裂原活化蛋白激酶;TGF-β:转化生长因子β;NLRP3:核苷酸结合寡聚化结构域(NOD)样受体热蛋白结构域相关蛋白3;caspase-1:天冬氨酸特异性半胱氨酸蛋白酶1;TMAO促使巨噬细胞M1极化,刺激NLRP3、caspase-1表达,促进IL-1β、IL-18释放,活化炎性小体,促进炎症反应。此外,TMAO激活TGF-β/Smad2通路,促进纤维化发生


除引起心肌纤维化、心肌舒张功能障碍,TMAO还诱导动脉粥样硬化,增加心肌梗死风险。CVD和动脉粥样硬化导致肾动脉狭窄或eGFR下降,TMAO排出减少、循环浓度升高,促进泡沫细胞聚集于血管内膜,进而抑制胆固醇反向转运,影响胆汁酸和胆固醇代谢,升高血小板活性,促进动脉粥样硬化斑块形成。TMAO诱导血管氧化应激,抑制一氧化氮产生、损伤血管内皮细胞功能,促进炎症反应和血管并发症形成[9]。在CKD大鼠,TMAO经活化NLRP3炎性体和NF-κB信号通路促进血管钙化,抑制TMAO产生后血管钙化程度明显减轻[10]。此外,TMAO还直接抑制心肌线粒体丙酮酸和脂肪酸氧化,导致能量代谢紊乱,增加CVD发生风险[11]。研究人员分别以含1.2%胆碱的饲料和普通饲料喂养5/6肾切除CKD模型小鼠和正常对照小鼠,8周后CKD小鼠血清TMAO水平明显高于对照组,进食胆碱加重CKD小鼠的心功能不全,以药用炭吸附TMAO后小鼠心功能改善,证实了TMAO对心脏的作用[12]。RNA测序分析显示胆碱抑制CKD小鼠心脏血管生成素表达,食用含胆碱饲料的CKD小鼠心脏血管密度减低,血管生成相关基因表达减少。胆碱下调CKD小鼠心脏缺氧诱导因子1α(HIF-1α)蛋白表达,而HIF-1α稳定剂GF-4592能降低高胆碱饮食CKD小鼠的TMAO水平,提高其心脏血管生成量和心脏功能,表明TMAO可能通过抑制HIF-1α蛋白表达减少心脏血管生成[12]


TMAO影响CKD的临床研究



在一项横断面研究中,射血分数保留型心力衰竭(HFpEF)患者的循环TMAO水平明显高于健康对照,且与eGFR负相关,校正年龄、性别、血压、血清肌酐等传统危险因素后TMAO水平仍是HFpEF的独立危险因素,提示可将TMAO作为生物标志物识别HFpEF[13]。一项纳入108例T2DM患者和33例健康对照的横断面研究中,逻辑回归分析表明糖尿病肾脏病(DKD)患者血清TMAO水平明显高于健康对照和T2DM非肾脏病患者,且TMAO与eGFR负相关、与尿素氮和尿白蛋白/肌酐比值正相关,血清TMAO是DKD的独立危险因素,可将TMAO作为DKD潜在生物标志物[14]。但影响TMAO浓度的因素较多,如长期过量摄入红肉即可促进肠道菌群产生TMAO,将其作为生物标志物对临床患者进行分类的准确性仍需验证[15]


欧洲Metacardis研究共纳入1741例成人,检测空腹外周血TMAO浓度,分析其与年龄、饮食、肾功能、肠道菌群等因素之间的关系,结果表明除年龄外,肾功能是影响循环TMAO水平的主要变量,肠道微生物组成和饮食仅对TMAO水平略有影响,中介分析提示TMAO水平和肾功能之间存在因果关系,高浓度TMAO促进肾脏纤维化、瘢痕化[16]。埃及一项纳入45例维持性血液透析(MHD)患者的前瞻性研究显示,斋月禁食(只进早晚餐)后血清超敏C反应蛋白、硫酸吲哚酚、TMAO水平和血小板/淋巴细胞及中性粒细胞/淋巴细胞比值均较斋月开始前明显下降,表明间歇禁食可改善MHD患者的微炎症状态,有助于减少CVD发生风险[17]。动脉粥样硬化多种族研究(MESA)中位随访16.9年,共1704例死亡,其中411例死于CVD,在基线和研究开始后5年分别检测受试者血清TMAO,发现TMAO与全因死亡、CVD死亡、肾脏死亡有关,与肿瘤和痴呆等死因无关[18]


CKD治疗常用药对TMAO水平的影响



除年龄、eGFR、慢性疾病等因素外,体育运动、膳食补充剂、药物等均可直接或间接影响人体内TMAO的合成。CKD治疗用药对血清TMAO水平也会产生影响。有研究显示,钠-葡萄糖协同转运蛋白2抑制剂(SGLT2i)不仅优化肠道微生物组成,还抑制TMAO合成,但EMMY试验的二次分析结果却与之矛盾[19]。通过比较急性心肌梗死后恩格列净治疗26周与常规治疗组血清TMAO水平发现,两组第6周、第26周血TMAO水平均较基线明显升高(P<0.001),其中恩格列净组TMAO平均升高程度高于常规治疗组(P=0.007),年龄与TMAO水平正相关,eGFR和心脏射血分数与TMAO水平负相关[19]。Metacardis研究显示胰高糖素样肽1受体激动剂(GLP-1RA)在改善eGFR的同时,降低T2DM患者循环TMAO水平,在校正年龄、性别、高血压等因素后结论仍然成立,提示GLP-1RA可能通过抑制TMAO合成实现心肾获益[16]。恰当选择降糖药有助于减少TMAO相关CVD的发生,SGLT2i单药或联合GLP-1RA对循环TMAO水平及心肾结局的确切影响有待临床研究进一步验证。


靶向TMAO治疗CKD的研究进展



人肠道内10余种菌属参与产生TMAO,针对肠道微生物的调节治疗能够减少TMAO生成。尽管广谱抗生素可有效抑制肠道微生物生长,下调TMAO水平,但长期使用广谱抗生素存在细菌耐药风险,且易导致CKD肠道菌群紊乱加重、肠黏膜屏障受损、肠道炎症水平升高等问题[20-22]利福昔明是非氨基糖苷类肠道抗生素,不易吸收,局限性针对肠道病原体,对肠道微生态影响较小。将38例CKD 3~5期患者随机分至利福昔明组和安慰剂组,用药10 d后检测TMAO、血清毒素、炎症因子水平和肠道菌群分布,组间比较TMAO、血清毒素以及炎症因子水平差异无统计学意义,利福昔明组肠道菌群多样性和丰度明显低于安慰剂组[23]。表明短期利福昔明治疗无法减少CKD肠道来源的心血管毒素和炎症细胞因子,但足以影响肠道菌群分布,长期用药的疗效及不良反应有待研究。


饮食控制   单纯减少红肉、禽蛋、牛奶等富含TMAO食物摄入量即可非特异性抑制TMAO生成,具有治疗作用。一项单中心研究中,23例有糖代谢异常或肥胖症的患者素食8周后,血浆TMAO水平和餐后血糖均较基线下降,与体重变化无关,血脂和肾功能均改善,但饮食恢复既往日常模式4周后血浆TMAO水平反弹[24]


益生菌   改变肠道菌群分布不能有效减轻尿毒症症状[25-26]。对CKD患者补充益生菌3月,TMAO水平无明显变化但血浆甜菜碱浓度显著升高[27]。对21例MHD患者开展的随机、双盲、安慰剂对照研究显示,补充益生菌(嗜热链球菌+嗜酸乳杆菌+长双歧杆菌)3月后血浆TMAO水平稳定,可能与给药方式、干预时程有关,用药前后检测肠道菌群组成及丰度有助于明确对肠道菌群有无影响[28]。在CKD患者开展的随机对照临床试验显示,使用益生菌并未降低患者体内尿毒症毒素和炎症标志物水平[27]。尽管益生菌、益生元不改变血清毒素浓度,此类治疗仍可延缓CKD和CVD进展。SYNERGY是旨在评估合生素(益生菌和益生元)靶向抑制肠道菌群产生尿毒症毒素的临床研究,共入组37例CKD 4~5期受试者,随机、双盲分组至合生素组或安慰剂组,治疗6周后洗脱4周,继而交叉干预6周,以血清尿毒症毒素、脂多糖、TMAO和炎症及氧化应激标志物水平反映心血管风险,以24 h尿蛋白和白蛋白定量、KIM-1和eGFR反映肾损伤严重程度,目前研究结果尚未发表[29]


甜菜碱   食用甜菜碱的C57BL/6J小鼠血浆TMA和TMAO水平明显低于食用胆碱组,分析显示甜菜碱以氢键结合CutC酶,抑制其对胆碱转化为TMA过程的催化活性,口服甜菜碱有利于降低血小板高反应性和血栓风险[30]


其他   纳米金颗粒(GNS)具有显著抗微生物、抗炎活性,已被用于治疗眼部疾病和类风湿关节炎。基因测序显示GNS明显改变肠道微生物多样性和群落组成,降低骨质疏松模型小鼠体内TMAO相关代谢产物的水平,且通过抑制血浆肿瘤坏死因子α(TNF-α)、IL-6、集落细胞刺激因子(G-CSF)等促炎因子释放,改善雌激素缺乏诱导的骨质疏松[31]。以高胆碱饮食喂养腹主动脉瘤(AAA)模型小鼠后,小鼠血浆TMAO水平升高,AAA直径增加,用TMA裂解酶抑制剂氟甲基胆碱(FMC)处理后血浆TMAO产生减少,AAA小鼠动脉瘤的形成和发展均受抑制,RNA测序与功能分析显示AAA小鼠食用胆碱或以TMAO处理人血管平滑肌细胞均可活化内质网应激反应相关基因通路,其中对内质网应激激酶PERK影响尤为显著,上述结果表明TMAO上调主动脉壁内质网应激相关基因,促进AAA形成,FMC通过抑制TMAO生成治疗AAA[32]。基础研究表明CKD母鼠后代可遗传高血压和肾脏萎缩,子代高血压与血浆TMAO水平升高、氧化应激及肠道微生物易位有关,以碘甲基胆碱(IMC)抑制TMAO产生能够避免CKD母鼠子代在12周龄发生高血压和肾脏萎缩,IMC的治疗获益与TMAO水平下降、产醋菌属和双歧杆菌丰度升高有关[33]。另一项研究中在IMC阻断胆碱饮食诱导的TMAO生成后,CKD模型小鼠肾小管间质纤维化明显减轻,表明IMC治疗可逆转胆碱饮食诱导的TMAO相关肠道微生物菌落组成改变和肾功能损害[34]。现有结果表明检测TMAO代谢通路中相关标志物水平有助于对冠状动脉粥样硬化、CKD、DKD等疾病风险进行临床判断,靶向TMAO治疗有望改善CKD心血管病变、矿物质骨代谢异常、持续微炎症状态等常见问题[35]


小结

肠道菌群代谢产物TMAO影响CKD、CVD、代谢性疾病等慢性病的发生发展。目前针对TMAO相关代谢产物的检测技术和靶向治疗用药均已取得研究进展。调整饮食结构、补充益生菌/益生元可调节肠道微生物组成和功能并改变肠道生化环境,GNS可降低炎症水平、治疗骨质疏松,FMC、IMC通过抑制TMAO代谢通路下调血浆TMAO水平,在动物模型中有效减轻血管病变和肾脏损伤。靶向TMAO治疗有助于改善肾脏病变,可能成为治疗CKD的新技术,但仍需进一步临床研究明确此类药物的疗效和安全性。


参考文献
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[引用本文]杨柳, 谢红浪. 靶向氧化三甲胺治疗慢性肾脏病的研究进展[J]. 肾脏病与透析肾移植杂志, 2024, 33(5): 474-479.

YANG Liu, XIE Honglang. Advances in study on targeting trimethylamin N-oxide therapy for chronic kidney disease[J]. Chinese Journal of Nephrology, Dialysis & Transplantation, 2024, 33(5): 474-479.


来源:肾脏病与透析肾移植杂志订阅号

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